【佳學(xué)基因檢測(cè)】將基因信息大眾化的第二代高通量測(cè)序技術(shù)(NGS)
第二代測(cè)序技術(shù)也稱高通量測(cè)序(high-throughput sequencing,HTS)技術(shù),相對(duì)于一代測(cè)序,它可以實(shí)現(xiàn)大規(guī)模平行測(cè)序,基本原理是將基因組分割成短片段,對(duì)短片段測(cè)序再進(jìn)行拼接。
對(duì)比第一代測(cè)序技術(shù)擁有著高通量、低成本等優(yōu)勢(shì),目前相同數(shù)據(jù)量的檢測(cè),其成本約為一代測(cè)序技術(shù)的0.01%,極大地推動(dòng)了測(cè)序技術(shù)在臨床檢測(cè)方面的應(yīng)用。
2005年454公司基于焦磷酸測(cè)序法推出了Genome Sequencer 20 System(GS 20)系統(tǒng),開啟了高通量測(cè)序的進(jìn)程。2007年,羅氏公司收購了454,并推出了一系列性能更優(yōu)的NGS系統(tǒng),極大的提升測(cè)序通量和正確性。
盡管具有讀長優(yōu)勢(shì),但是測(cè)序通量和成本始終限制了454平臺(tái)的推廣,同樣數(shù)據(jù)量下成本約是illumina的100倍,因此羅氏在2016年底終止了454NGS測(cè)序 相關(guān)的業(yè)務(wù)。
2006年Solexa公司推出了Genome Analyzer系統(tǒng),包括DNA簇、橋式PCR和可逆阻斷等技術(shù),這使得GA系統(tǒng)在高通量、低成本、應(yīng)用范圍廣等方面具有明顯優(yōu)點(diǎn)。2007年,Illumina公司收購了Solexa并發(fā)布二代測(cè)序儀。
二代測(cè)序經(jīng)過這些年的發(fā)展已經(jīng)步入成熟期,目前市場上根據(jù)測(cè)序技術(shù)可以可以把二代測(cè)序平臺(tái)分為4類:邊合成邊測(cè)序法(Illumina)、半導(dǎo)體測(cè)序法(ThermoFisher)、聯(lián)合探針錨定聚合測(cè)序法(華大智造)和焦磷酸測(cè)序法。
Illumina邊合成邊測(cè)序
Illumina測(cè)序的流程主要包括樣品制備,簇生成,測(cè)序,數(shù)據(jù)分析。
首先是樣本制備和建庫。用DNA或RNA抽提試劑盒提取核酸,然后用超聲波將其隨即打斷成90-250bp左右的長度或者控制全部DNA在一定長度范圍內(nèi)。
為了后續(xù)的擴(kuò)增和測(cè)序,需要在這些DNA片段加入特定的序列。如下圖,分別是與流動(dòng)池引物互補(bǔ)結(jié)合的區(qū)域(P5、P7)、與Read 1和read 2測(cè)序引物結(jié)合的區(qū)域(Rd1SP,Rd2 SP)以及標(biāo)簽序列區(qū)域Index。
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添加完接頭序列的DNA合集稱為DNA文庫,這樣就完成了建庫,該步驟可以采用商業(yè)化的文庫制備試劑盒完成。
第二步是成簇Cluster Generation。
成簇是上述DNA片段被擴(kuò)增的過程,該過程在流動(dòng)池(Flow cell) 中完成。流動(dòng)池是一種含有8個(gè)通道的厚玻璃片,每條通道中都隨即植入了能與文庫接頭P5或P7互補(bǔ)結(jié)合的短DNA片段。
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首先引物和流動(dòng)池的固定DNA片段互補(bǔ)配對(duì),固定在通道表面,然后在DNA聚合酶作用下DNA鏈進(jìn)行互補(bǔ)延伸形成DNA雙鏈。通過變性,其中的單鏈被洗脫,剩下的一條單鏈會(huì)與旁邊的固定接頭鏈接,形成單鏈橋。
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同樣的,單鏈橋在DNA聚合酶作用下延伸配對(duì)形成雙鏈橋,通過變性形成2條單鏈,這兩條單鏈又分別與旁邊的固定引物結(jié)合,形成2個(gè)單鏈橋。重復(fù)這個(gè)循環(huán),賊終形成數(shù)百萬的DNA簇。
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上述過程所有的DNA片段都會(huì)被擴(kuò)增,擴(kuò)增結(jié)束后,反向連會(huì)被切斷洗脫,只留下正向鏈,為防止互補(bǔ)結(jié)合重新形成單鏈橋,3‘端被封鎖。
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第三步,測(cè)序。
首先,在流動(dòng)池中加入熒光標(biāo)記的dNTP和酶,由引物起始開始合成子鏈。由于dNTP存在 3’端疊氮基會(huì)阻礙子鏈延伸,因此每個(gè)循環(huán)只能測(cè)得一個(gè)堿基。合成完一個(gè)堿基后,洗掉多余的dNTP和酶,使用激光掃描獲得熒光信號(hào)。
隨后加入試劑將疊氮基團(tuán)與熒光基團(tuán)切除,然后流動(dòng)池再通入熒光標(biāo)記的dNTP和酶,由引物起始開始合成一個(gè)堿基。不斷重復(fù)這個(gè)過程,完成第一次讀取。
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所有的DNA片段的一個(gè)堿基會(huì)被同時(shí)讀取,在大規(guī)模并行的過程中,機(jī)器讀取的圖像類似下面這樣:
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同時(shí),加入了不同的index來區(qū)分每個(gè)樣本及正負(fù)鏈。在完成第一次讀取后,復(fù)制出的鏈會(huì)被洗去,index片段引物被引入并與模板雜交,完成序列讀取后被洗去。這樣讀取到的序列與開始時(shí)已知的index比對(duì)后就可以給測(cè)得的序列貼上標(biāo)簽,方便后續(xù)分析。
Paired-end測(cè)序已經(jīng)是現(xiàn)在的主流,要完成雙末端測(cè)序,首先要將模板鏈3’去保護(hù),模板折疊,index片段引入,在聚合酶參與下形成雙鏈橋,然后變性,恢復(fù)為單鏈,然后將正向鏈切除并洗去,留下反向鏈,與正向鏈類似,經(jīng)過多個(gè)循環(huán)后完成讀取。
第四步,數(shù)據(jù)分析
測(cè)序完成后會(huì)產(chǎn)生數(shù)百萬個(gè)reads,基于在樣品準(zhǔn)備時(shí)構(gòu)建的index 分類來自不同樣本的序列。對(duì)于每個(gè)樣品來說,具有相似延伸的堿基被聚在一起。正向和反向read配對(duì)生成連續(xù)序列。這些序列通過與參考基因組匹配后,實(shí)現(xiàn)完整序列的構(gòu)建。
Thermo Fisher半導(dǎo)體測(cè)序法
賽默飛的Ion Torrent平臺(tái)是基于半導(dǎo)體技術(shù)的高通量測(cè)序儀。該平臺(tái)使用了一種布滿小孔的高密度半導(dǎo)體芯片,一個(gè)小孔就是一個(gè)測(cè)序反應(yīng)池,孔底部帶有感應(yīng)器。
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其測(cè)序的核心技術(shù)是利用半導(dǎo)體技術(shù)進(jìn)行信息讀取,測(cè)序過程中每當(dāng)有堿基結(jié)合,便會(huì)釋放H+,而氫離子會(huì)引起電勢(shì)的改變從而被檢測(cè)到。通過對(duì)氫離子的檢測(cè)并轉(zhuǎn)化為電信號(hào),賊終實(shí)現(xiàn)實(shí)時(shí)堿基判讀。
其測(cè)序的流程主要包括建庫,油包水PCR,測(cè)序,數(shù)據(jù)分析。
首先是建庫
與illumina 的 3’端帶突出 T 堿基粘性末端的接頭有所不同,建庫過程中DNA兩端加入的是平端接頭(P1)和X或A接頭,X接頭帶有index,A接頭不帶。
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X 接頭帶Barcode 序列(近末端藍(lán)色序列),而A 接頭不帶Barcode 序列。
X 接頭的好處是可以把一個(gè)芯片的測(cè)序通量分配給多個(gè)文庫,測(cè)完序之后用Barcode 區(qū)分。
A 接頭的好處是直接測(cè)到樣本序列,這樣對(duì)于充分利用測(cè)序的讀長無疑是更好的。但是它的缺點(diǎn)是沒有Barcode,所以一張芯片只能放一個(gè)樣本。
AmpliSeq 是Ion Torrent 平臺(tái)上的建庫方案,它的核心是通過多重PCR 的方法,一次從樣本中把要測(cè)序的多個(gè)DNA 片段給擴(kuò)增出來,然后轉(zhuǎn)化成文庫進(jìn)行測(cè)序。
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PCR 產(chǎn)物兩端20-30bp 堿基都是 PCR引物的序列,如果將其進(jìn)行測(cè)序,則會(huì)浪費(fèi)掉相當(dāng)一部分測(cè)序讀長及數(shù)據(jù)量。因此在這個(gè)引物上特別設(shè)計(jì)了一種化學(xué)修飾,這種化學(xué)修飾可以被Fupa試劑所消化,而后的測(cè)序就可以盡可能多地測(cè)到樣本序列。
乳液PCR或油包水PCR
Ion Torrent 測(cè)序前需要把文庫結(jié)合到測(cè)序微珠上去,并且進(jìn)行擴(kuò)增,此種方法稱為油包水PCR,也稱Emulsion PCR(乳液PCR)。
EP 管中包含油相和水相,其中水相是核心,油相起到分隔作用。水相中包括文庫、引物、酶、MasterMix、測(cè)序微珠等PCR反應(yīng)的主要成份。
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測(cè)序微珠的直徑約1~2.4微米,每個(gè)油包水PCR都含有許多微珠,這些微珠的表面共價(jià)連接了許多PCR引物,與P1序列互補(bǔ)。
同時(shí)油包水PCR中的游離PCR引物,其序列與A/X接頭一致,且5‘端都標(biāo)記了生物素。
把引物、酶、測(cè)序微珠等先在水相中混合,再加入油,混合形成乳濁液,油把水相分隔成一個(gè)個(gè)的小水滴。PCR反應(yīng)后,微珠表面就會(huì)長出水滴內(nèi)所含DNA 文庫的擴(kuò)增拷貝。
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然后加入帶有鏈霉親和素標(biāo)記的磁珠與微珠進(jìn)行混合。發(fā)生了PCR 的微珠由于其引物上帶有生物素,便會(huì)與磁珠結(jié)合;沒有發(fā)生PCR 的微珠由于沒有生物素,不會(huì)與磁珠結(jié)合。接著,用磁鐵吸附富集有效微珠,再清洗掉上清液中沒有PCR 的微珠,賊后用洗脫液把微珠與磁珠分離開來,進(jìn)行測(cè)序。
測(cè)序
測(cè)序主要發(fā)生在一張半導(dǎo)體芯片上,上面做了數(shù)以百萬、千萬計(jì)的小孔,每個(gè)小孔的既是測(cè)序微珠的容器,又同時(shí)是一個(gè)微型的PH 計(jì)。
每個(gè)小孔正好可以容納一個(gè)測(cè)序微珠,當(dāng)DNA聚合酶把核苷酸聚合到延伸的DNA鏈上時(shí),會(huì)釋放出一個(gè)氫離子,反應(yīng)池中的PH發(fā)生改變,位于池下的離子感受器就會(huì)感受到信號(hào),把化學(xué)信號(hào)直接轉(zhuǎn)化為數(shù)字信號(hào),從而讀出DNA序列。
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數(shù)據(jù)分析
把分別含A、C、G、T 四種 dNTP 的溶液,分別依次地流過芯片的表面。
舉例來說,流入的是dCTP 溶液,而模板上正好有一個(gè)G 堿基,就發(fā)生聚合反應(yīng),并產(chǎn)生電壓變化,而且會(huì)被記錄下來。如果流入的溶液與模板上的堿基不匹配,就不會(huì)發(fā)生聚合反應(yīng),也就沒有電壓變化,也就不會(huì)有堿基被記錄下來。
如果正好有 2 個(gè)一樣的堿基相鄰,一次就會(huì)有2 個(gè)堿基被聚合到DNA 鏈上,電壓變化值就會(huì)加倍,序列中2 個(gè)新的堿基被記錄下來。
華大智造聯(lián)合探針錨定聚合測(cè)序法
2013年3月18日,華大基因?qū)G(Complete Genomics)公司全額收購,開啟了華大測(cè)序儀之路。歷經(jīng)多年的研發(fā)和改進(jìn),華大基因相繼推出的BGISEQ-500、BGISEQ-50、MGISEQ-200、MGISEQ-2000M、MGISEQ-T7等測(cè)序體系。
其測(cè)序平臺(tái)采用的是DNB(DNA Nanoball ,DNA納米球)測(cè)序技術(shù),每個(gè)DNA的直徑約220-240nm。
主要步驟包括文庫制備,cPAS測(cè)序,數(shù)據(jù)分析等。
樣本準(zhǔn)備和建庫
MGI文庫構(gòu)建采用泡狀接頭及與之對(duì)應(yīng)的擴(kuò)增產(chǎn)物,有長接頭及短接頭,單端和雙端index。
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將文庫進(jìn)行單鏈分離及環(huán)化處理后,以單鏈環(huán)狀DNA為模板,在DNA聚合酶作用下使用滾環(huán)擴(kuò)增將單鏈環(huán)狀DNA擴(kuò)增2-3個(gè)數(shù)量級(jí),此時(shí)擴(kuò)增產(chǎn)物被稱為DNB。
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DNB經(jīng)過DNB裝載技術(shù)固定在陣列化的硅芯片上形成納米芯片,由于一個(gè)DNB結(jié)合到芯片上的小孔后會(huì)排斥其他DNB結(jié)合,因此每個(gè)小孔僅容納一個(gè)DNB,高效了信號(hào)點(diǎn)間不會(huì)相互干擾。
測(cè)序
采用半導(dǎo)體加工工藝,在經(jīng)過修飾的硅片表面形成結(jié)合位點(diǎn)陣列(直徑約200nm),實(shí)現(xiàn)DNA納米球的規(guī)則排列吸附,陣列位點(diǎn)的間距約700nm,每個(gè)位點(diǎn)只固定一個(gè)DNB,高效不同納米球之間的光信號(hào)不會(huì)互相干擾。
帶有熒光探針的Read1引物在DNB上匹配互補(bǔ),隨后系統(tǒng)對(duì)光信號(hào)采集,得到待測(cè)序列。
MDA(multipledisplacement amplification)二鏈測(cè)序,隨機(jī)引物在多個(gè)位點(diǎn)與模板DNA結(jié)合,在Phi29DNA聚合酶作用下起始復(fù)制,沿著DNA模板合成DNA,同時(shí)取代模板互補(bǔ)鏈;被置換的互補(bǔ)鏈又變成新的模板進(jìn)行后續(xù)擴(kuò)增。完成第一鏈測(cè)序后,在該酶作用下形成第二鏈,通過DNA分子錨,進(jìn)行第二鏈cPAS測(cè)序。
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